植物组织蛋白质提取方法

时间:2021-09-14 15:48:39 资料 我要投稿

植物组织蛋白质提取方法

用200毫摩每升的tris-cl 和62.5毫摩每升的tris-cl,我们研究室一般用100毫摩每升的tris-cl,pH 8.0 .另外,最好加150毫摩每升的NaCl,用来分离以弱电荷结合到多糖上的蛋白。

植物组织蛋白质提取方法

2我提的蛋白难溶,请问怎么解决?1、请问这是为什么呢?怎么解决?2、溶解时是先在100℃沸水浴后在涡旋吗?3、涡旋时产生大量泡沫,对蛋白有影响吗?4、是在常温溶解还是在4℃?或-20℃?5、一般溶解需要多长时间?怎样才算溶解充分了?

我也是做植物叶片的.,建议你可以用TCA-丙酮沉淀,方法如下:1、在液氮中研磨叶片30min,加PVP,和石英砂2、加入样品体积3倍的提取液(丙酮溶液1)在-20℃的条件下过夜,然后离心(4℃10000rpm以上1小时)弃上清。3. 每份加入9ml丙酮溶液II,捣碎沉淀,常温振动混匀,-20℃沉淀1h;10000rpm,4℃离心15min,弃上清.4. 每份加入9ml丙酮溶液II,常温振动混匀,-20℃沉淀1h;10000rpm,4℃离心15min,弃上清.5. 每份加入9ml 80%丙酮溶液III, 常温振动混匀,-20℃沉淀1h, 10000rpm,4℃离心15min,弃上清6.干燥成硬块,磨成粉磨-20℃保存待用。

第二个问题:37度水浴

第三个问题:涡旋时产生大量泡沫,没有影响第四个问题:37度溶解

第五个问题1个小时,中间混匀数次

出现这种情况是很正常的,要是全部都溶了倒是不太正常。用沉淀法浓缩蛋白都存在一个变性的问题,在具体的操作过程中,有一部分蛋白变性了,所以会不溶解。操作的时候尽量保持低温!溶解的时候可以在常温下,蛋白变成粉末后,立即加1*SDS上样缓冲液,用加样器吹打,大约5分钟就好,可以用来进行下一步的实验了。也可以在4度溶解过夜。涡旋时产生大量泡沫,个人认为影响不大一般溶解半个小时就很充分了,但仍会有很多不溶物!可以离心弃掉! 丙酮沉淀之后要干燥,这个过程一定不要时间太长,不然样品干燥得过了,就很难溶了。即使你加上了硫脲,高浓度尿素也不行。我的经验是只要半个小时左右就足够了,表面上看上去比较干就可以了。

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